ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ

Балнур Кабылбекова; Тойгул Нурсейтова; Зарина Юсупова; Ирина Ковальчук; Нина Чуканова; Марина Уразаева; Айгуль Маденова

doi:10.37884/3-2024/10

Аннотация

Одной из важных задач питомниководства в Казахстане является необходимость производства не только рядового, а безвирусного сертифицированного посадочного материала. Первым шагом в этом направлении с целью перевооружения садоводства в республике является закладка исходных маточных насаждений безвирусным посадочным материалом. Решение этих вопросов стало возможным с разработкой и внедрением биотехнологических систем в питомниководство. В статье представлены состав вирусных болезней клоновых подвоев косточковых культур в Казахстане и результаты усовершенствования протокола их клонального микроразмножения на различных этапах. Коллекция клоновых подвоев для сливы, абрикоса и персика, состоящая из 9 генотипов, протестирована на наличие 7 вирусов. Согласно результату ПЦР анализа, клоновые подвои свободны от вирусных болезней, а у формы №3 дикорастущего абрикоса P. armeniaca обнаружен вирус Plum pox potyvirus (PPV).

Свободные от основных вирусов растения вводили в асептическую культуру in vitro. Проведенные эксперименты показали, что побеги подвоев косточковых культур эффективно стерилизовать от сапрофитной микрофлоры 0,2% HgCl₂в экспозиции 3 и 4 минуты. В этом случае количество способных регенерировать составляет 70% и 80%. Лучшей для введения эксплантов является питательная среда МС– 0,2-0,4 мг/л БАП, 2,0 мг/л аскорбиновой кислоты, 0,5мг/л B₁, 0,5мг/л B₆, 0,5 мг/л PP и 30 мг/л сахарозы. Оптимальная среда для клонального размножения in vitro – МС с содержанием витаминов 0,1 мг/л В₁, 0,5 мг/л В₆, 0,5 мг/л РР, 1 мг/л С, 100 мг/л мезоинозита, 2 мг/л глицина, 0,8 мг/л 6-БАП. У эксплантов, культивируемых на этой среде отмечено хорошее развитие конгломератов, высота побегов в пределах 1,5-2,5 см. В культуру in vitro введены и размножены 7 клоновых подвоев косточковых культур свободных от вирусных инфекций.

клоновые подвои, косточковые культуры, вирусы, биотехнология, размножение in vitro, питательная среда, безвирусный материал

01 Введение

Полный текст статьи доступен для скачивания в формате PDF на панели справа.

02 Список литературы

1 Panis, B., Nagel, M., & Van den Houwe, I. (2020). Challenges and prospects for the conservation of crop genetic resources in field genebanks, in in vitro collections and/or in liquid nitrogen. Plants, 9(12), 1634.
2 Zuļģe, N., Kāle, A., Gospodaryk, A., Vēvere, K., & Moročko-Bičevska, I. (2017, May). Establishment of nuclear stock collections for apple and pear in Latvia. In Proceedings of the Latvian Academy of Sciences. Section B. Natural, Exact, and Applied Sciences. (Vol. 71, No. 3, pp. 156-165).
3 Hernández, F., Pinochet, J., Moreno, M. A., Martínez, J. J., & Legua, P. (2010). Performance of Prunus rootstocks for apricot in Mediterranean conditions. Scientia Horticulturae, 124(3), 354-359.
4 Neumüller, M., Mühlberger, L., Siegler, H., Hartmann, W., & Treutter, D. (2012, May). New rootstocks with resistance to Plum pox virus for Prunus domestica and other stone fruit species: the'Docera'and'Dospina'rootstock series. In X International Symposium on Plum and Prune Genetics, Breeding and Pomology 985 (pp. 155-165).
5 Еремин, Г. В., & Еремин, В. Г. (2009). Использование генофонда рода Prunus L. в селекции клоновых подвоев косточковых культур. Биология растений и садоводство: теория, инновации, (131), 90-94.б
6 Hartmann, H. T., Kester, D. E., Davis, F. T., & Geneve, R. L. (2007). Propagation methods and rootstocks for fruit and nut species. In H. T. Hartmann & D. E. Kester (Eds.), Plant propagation: Principal and practice. (pp. 717–757). New York: Pearson Education.
7 Andersen, R., Freer, J., & Robinson, T. (2006). Plum rootstock trial at Geneva: A progress report. New York Fruit Quarterly, 14(1), 27–28.
8 Botu, I., Preda, S., Turcu, E., Achim, G., & Botu, M. (2007). ‘Rival’—A new rootstock for plum. Acta Horticulturae, 732, 253–256.
9 Kumar, A., Rathore, J. P., Iqbal, U., Sharma, A., Nagar, P. K., & Mir, M. M. (2021). Rootstocks of stone fruit crops. Production Technology of Stone Fruits, 131-169.
10 Казыбаева, С. Ж., Уразаева, М. В., & Борисова, А. А. (2021). Современные системы ведения питомниководства республики Казахстан. Плодоводство и ягодоводство России, 66(1), 89-95.
11 Уразаева М., Ефремова Ю., Ормакаев А. Интродуцированные клоновые подвои косточковых / Izdenister natigeler. – 2023. – №2 (98). – С. 143-153. DOI: https://doi.org/10.37884/2-2023/14
12 Certification scheme for almond, apricot, peach and plum. EPPO Bulletin, (2001), 31: 463-478. https://doi.org/10.1111/j.1365-2338.2001.tb01028.x
13 Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures //Physiologia plantarum. – 1962. – Т. 15. – №. 3. – С. 473-497
14 Quoirin M., Lepoivre P. H. Improved media for in vitro culture of Prunus sp //Symposium on Tissue Culture for Horticultural Purposes 78. – 1977. – С. 437-442.
15 Турдиев Т.Т., Ковальчук И. Ю., Успанова Г.К., Чуканова Н.И., Фролов С. Н. Оптимизация клонального микроразмножения для сохранения генофонда растений груши // Вестник КазНУ, Серия биологическая. – 2015. – № 3. – С. 356-362.;
16 Halim, M. A., Alam, M. F., Rahman, M. H., Hossain, M. B., & Uddin, M. B. Sterilization process for In vitro regeneration of Stevia (Stevia rebundiana Bertoni) //International Journal of business, social and scientific research. – 2016. – Т. 4. – №. 4. – Р. 320-323.
17 Беседина Е. Н., Бунцевич Л. Л. Усовершенствования технологии клонального микроразмножения подвоев яблони на этапе введения в культуру in vitro // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. – 2015. – №. 111. – с. 1-19.
18 Vujović T. et al. In vitro propagation of plum rootstocks //Voćarstvo: Journal of Pomology. – 2018. – Т. 52. – №. 203-204. – С. 91-97.
19 Супрун И.И., Амосова М.А., Лободина В.Е., Аль-Накиб Е.А., Авакимян А.О., Егорова О.В. Оптимизация этапов клонального микроразмножения подвоев косточковых культур // Научные труды СКФНСЦСВВ. – Т.36. 2023г.

Ссылки для цитирования

[1]2024. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ . Izdenister natigeler. 3(103) (Sep. 2024), 86–97. DOI:https://doi.org/10.37884/3-2024/10.

(1)ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ . Izdenister natigeler 2024, No. 3(103), 86-97. https://doi.org/10.37884/3-2024/10.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ . (2024). Izdenister Natigeler, 3(103), 86-97. https://doi.org/10.37884/3-2024/10

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ . Izdenister natigeler, [S. l.], n. 3(103), p. 86–97, 2024. DOI: 10.37884/3-2024/10. Disponível em: https://kazvetjournal.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/696. Acesso em: 15 sep. 2026.

“ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ ”. 2024. Izdenister Natigeler, no. 3(103) (September): 86-97. https://doi.org/10.37884/3-2024/10.

“ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ ” (2024) Izdenister natigeler, (3(103), pp. 86–97. doi:10.37884/3-2024/10.

[1]“ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ ”, Izdenister natigeler, no. 3(103), pp. 86–97, Sep. 2024, doi: 10.37884/3-2024/10.

“ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ ”. Izdenister Natigeler, no. 3(103), Sept. 2024, pp. 86-97, https://doi.org/10.37884/3-2024/10.

“ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ ”. Izdenister natigeler, no. 3(103) (September 30, 2024): 86–97. Accessed September 15, 2026. https://kazvetjournal.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/696.

1.ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ . Izdenister natigeler [Internet]. 2024 Sep. 30 [cited 2026 Sep. 15];(3(103):86-97. Available from: https://kazvetjournal.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/696

1.ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОСТАВА ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР В КАЗАХСТАНЕ И ОСОБЕННОСТИ РАЗМНОЖЕНИЯ IN VITRO ЗДОРОВЫХ РАСТЕНИЙ . Izdenister natigeler. 2024;(3(103):86-97. doi:10.37884/3-2024/10

[1] 1 Panis, B., Nagel, M., & Van den Houwe, I. (2020). Challenges and prospects for the conservation of crop genetic resources in field genebanks, in in vitro collections and/or in liquid nitrogen. Plants, 9(12), 1634.

[2] 2 Zuļģe, N., Kāle, A., Gospodaryk, A., Vēvere, K., & Moročko-Bičevska, I. (2017, May). Establishment of nuclear stock collections for apple and pear in Latvia. In Proceedings of the Latvian Academy of Sciences. Section B. Natural, Exact, and Applied Sciences. (Vol. 71, No. 3, pp. 156-165).

[3] 3 Hernández, F., Pinochet, J., Moreno, M. A., Martínez, J. J., & Legua, P. (2010). Performance of Prunus rootstocks for apricot in Mediterranean conditions. Scientia Horticulturae, 124(3), 354-359.

[4] 4 Neumüller, M., Mühlberger, L., Siegler, H., Hartmann, W., & Treutter, D. (2012, May). New rootstocks with resistance to Plum pox virus for Prunus domestica and other stone fruit species: the'Docera'and'Dospina'rootstock series. In X International Symposium on Plum and Prune Genetics, Breeding and Pomology 985 (pp. 155-165).

[5] 5 Еремин, Г. В., & Еремин, В. Г. (2009). Использование генофонда рода Prunus L. в селекции клоновых подвоев косточковых культур. Биология растений и садоводство: теория, инновации, (131), 90-94.б

[6] 6 Hartmann, H. T., Kester, D. E., Davis, F. T., & Geneve, R. L. (2007). Propagation methods and rootstocks for fruit and nut species. In H. T. Hartmann & D. E. Kester (Eds.), Plant propagation: Principal and practice. (pp. 717–757). New York: Pearson Education.

[7] 7 Andersen, R., Freer, J., & Robinson, T. (2006). Plum rootstock trial at Geneva: A progress report. New York Fruit Quarterly, 14(1), 27–28.

[8] 8 Botu, I., Preda, S., Turcu, E., Achim, G., & Botu, M. (2007). ‘Rival’—A new rootstock for plum. Acta Horticulturae, 732, 253–256.

[9] 9 Kumar, A., Rathore, J. P., Iqbal, U., Sharma, A., Nagar, P. K., & Mir, M. M. (2021). Rootstocks of stone fruit crops. Production Technology of Stone Fruits, 131-169.

[10] 10 Казыбаева, С. Ж., Уразаева, М. В., & Борисова, А. А. (2021). Современные системы ведения питомниководства республики Казахстан. Плодоводство и ягодоводство России, 66(1), 89-95.

[11] 11 Уразаева М., Ефремова Ю., Ормакаев А. Интродуцированные клоновые подвои косточковых / Izdenister natigeler. – 2023. – №2 (98). – С. 143-153. DOI: https://doi.org/10.37884/2-2023/14

[12] 12 Certification scheme for almond, apricot, peach and plum. EPPO Bulletin, (2001), 31: 463-478. https://doi.org/10.1111/j.1365-2338.2001.tb01028.x

[13] 13 Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures //Physiologia plantarum. – 1962. – Т. 15. – №. 3. – С. 473-497

[14] 14 Quoirin M., Lepoivre P. H. Improved media for in vitro culture of Prunus sp //Symposium on Tissue Culture for Horticultural Purposes 78. – 1977. – С. 437-442.

[15] 15 Турдиев Т.Т., Ковальчук И. Ю., Успанова Г.К., Чуканова Н.И., Фролов С. Н. Оптимизация клонального микроразмножения для сохранения генофонда растений груши // Вестник КазНУ, Серия биологическая. – 2015. – № 3. – С. 356-362.;

[16] 16 Halim, M. A., Alam, M. F., Rahman, M. H., Hossain, M. B., & Uddin, M. B. Sterilization process for In vitro regeneration of Stevia (Stevia rebundiana Bertoni) //International Journal of business, social and scientific research. – 2016. – Т. 4. – №. 4. – Р. 320-323.

[17] 17 Беседина Е. Н., Бунцевич Л. Л. Усовершенствования технологии клонального микроразмножения подвоев яблони на этапе введения в культуру in vitro // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. – 2015. – №. 111. – с. 1-19.

[18] 18 Vujović T. et al. In vitro propagation of plum rootstocks //Voćarstvo: Journal of Pomology. – 2018. – Т. 52. – №. 203-204. – С. 91-97.

[19] 19 Супрун И.И., Амосова М.А., Лободина В.Е., Аль-Накиб Е.А., Авакимян А.О., Егорова О.В. Оптимизация этапов клонального микроразмножения подвоев косточковых культур // Научные труды СКФНСЦСВВ. – Т.36. 2023г.